评估能够调节人类免疫系统与癌细胞之间相互作用的新疗法,需要先进的临床前疗效试验平台。免疫人源化 NSGTM 及其衍生品系功能强大,可用于各种免疫肿瘤学候选药物的体内临床前药效检测。
您可以利用移植了人类免疫细胞的 NSGTM 及其衍生品系,设计出高度靶向的人类生物学特异性实验。JAX 科学家可以协助您选择适合您需求的平台。
通过激活免疫系统以对抗肿瘤是非常有前景的癌症治疗策略。为了推动这些新型疗法的开发,专门的临床前模型在检测疗效和提供转化相关数据方面至关重要。例如,共移植人类肿瘤和人类免疫细胞的 NSGTM (NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ, JAX 品系货号 005557) 以及其 衍生品系 提供了一个强大的可以研究人类特异性免疫调节效应的临床前平台。
JAX 研究人员最近利用 PD-1 抑制剂派姆单抗证实了这种疗法的有效性。 这一疗法可以抑制共移植了 CD34+ 造血干细胞(hematopoietic stem cell, HSC) 和肺、肉瘤、膀胱、乳腺癌PDX 或乳腺癌细胞系的人源化 NSGTM 小鼠体内的肿瘤生长 (Wang et al., 2018)。对派姆单抗的响应因 HSC 供体不同而存在差异,凸显了在此类研究中使用多种 HSC 供体的重要性 (Wang et al., 2018)。 另一项实验中,在共同移植人黑色素瘤细胞系 SK-MEL-5 和 CD34+ HSC的 NSGTM 小鼠中,针对共刺激分子 GITR 的抗体疗法抑制了肿瘤生长,减少了肿瘤内调节 T 细胞的数量,同时增加了活化 CD8+ T 细胞的数量,这与同源模型系统中观察到的情况一致 (Mahne et al., 2017)。
人源化 NSGTM 还被证明可用于评估嵌合抗原受体 T 细胞 (chimeric antigen receptor T cells, CAR-T) 和双特异性 T 细胞衔接体 (bi-specific T cell engagers, BiTE) 两种免疫疗法的抗肿瘤 T 细胞活性。在 Jin 等人的研究中,他们对 CD70 CAR-T 细胞进行修饰,使其表达 IL-8 受体以增强肿瘤内 T 细胞的迁移,因为该趋化因子在肿瘤组织中表达增加并且可受辐射刺激。在局部放疗后,这些 CAR-T 被输入携带 U87胶质瘤细胞、PANC-1 胰腺肿瘤细胞或 SK-OV-3 卵巢肿瘤细胞的 NRG (NOD.Cg-Rag1tm1Mom Il2rgtm1Wjl/SzJ JAX 品系货号 007799) 或 NSG-B2m (NOD.Cg-B2mtm1Unc Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ, JAX 品系货号 010636) 小鼠体内 (Jin et al., 2019)。在被治疗的小鼠中,肿瘤内 CAR-T 的迁移增加,肿瘤负担减轻 (Jin et al., 2019)。
另一项研究中,在植入已知表达细胞内肿瘤标记物 WT1 的血液癌 NSGTM 小鼠身上评估了 BiTE 的疗效,该肿瘤表面在 MHC I 类分子 HLA-A2 背景下表达肿瘤标志物表位 (Dao et al., 2017)。 Dao 及其同事证实了针对肿瘤 WT1 和人 T 细胞 CD3 的 BiTE 免疫疗法的有效性。 有趣的是,作者开发并使用了 EB病毒 (Epstein Barr Virus,EBV) 特异性人类 T 细胞群,以预防移植物抗宿主病 (Graft versus Host Disease, GvHD) 相关的并发症 (Dao et al., 2015)。
JAX 现在提供了一种简化的方法,可以在这些类型的研究中使用人类 PBMC 时避免急性 GvHD。 在小鼠 MHC I 和 MHC II中携带无效突变的 NSGTM 衍生品系 (NOD.Cg-Prkdcscid H2-Ab1em1Mvw H2-K1tm1Bpe H2-D1tm1Bpe Il2rgtm1Wjl/SzJ, JAX 品系货号 025216) 能显著延缓和减轻人类 PBMC 移植后的 GvHD (Brehm et al., 2019)。由于研究窗口期更长、并发症更少,该平台在需要成熟人类 T 细胞的免疫肿瘤学研究中具有明显的优势。由于研究可持续时间更长、结果更清晰,该模型系统可以用于临床前 CAR-T 疗效研究。
杰克森实验室体内药效服务部门提供使用 CD34+ HSC 和 PBMC 人源化 NSGTM 和 NSGTM 衍生品系的肿瘤学疗效检测服务,此外还可提供可即刻使用的人源化小鼠现货,以推动您的研究和发现。 联系我们,告诉我们您对候选 CAR-T 和 BiTE 疗法的临床前试验需求!
参考文献
Brehm, M.A., Kenney, L.L., Wiles, M.V., Low, B.E., Tisch, R.M., Burzenski, L., Mueller, C., Greiner, D.L., Shultz, L.D., 2019. Lack of acute xenogeneic graft- versus-host disease, but retention of T-cell function following engraftment of human peripheral blood mononuclear cells in NSG mice deficient in MHC class I and II expression. FASEB J. Off. Publ. Fed. Am. Soc. Exp. Biol. 33, 3137–3151. https://doi.org/10.1096/fj.201800636R
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Dao, T., Pankov, D., Scott, A., Korontsvit, T., Zakhaleva, V., Xu, Y., Xiang, J., Yan, S., de Morais Guerreiro, M.D., Veomett, N., Dubrovsky, L., Curcio, M., Doubrovina, E., Ponomarev, V., Liu, C., O’Reilly, R.J., Scheinberg, D.A., 2015. Therapeutic bispecific T-cell engager antibody targeting the intracellular oncoprotein WT1. Nat. Biotechnol. 33, 1079–1086. https://doi.org/10.1038/nbt.3349
Jin, L., Tao, H., Karachi, A., Long, Y., Hou, A.Y., Na, M., Dyson, K.A., Grippin, A.J., Deleyrolle, L.P., Zhang, W., Rajon, D.A., Wang, Q.J., Yang, J.C., Kresak, J.L., Sayour, E.J., Rahman, M., Bova, F.J., Lin, Z., Mitchell, D.A., Huang, J., 2019. CXCR1- or CXCR2-modified CAR T cells co-opt IL-8 for maximal antitumor efficacy in solid tumors. Nat. Commun. 10, 4016. https://doi.org/10.1038/s41467-019-11869-4
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Wang, M., Yao, L.-C., Cheng, M., Cai, D., Martinek, J., Pan, C.-X., Shi, W., Ma, A.-H., De Vere White, R.W., Airhart, S., Liu, E.T., Banchereau, J., Brehm, M.A., Greiner, D.L., Shultz, L.D., Palucka, K., Keck, J.G., 2018. Humanized mice in studying efficacy and mechanisms of PD-1-targeted cancer immunotherapy. FASEB J. Off. Publ. Fed. Am. Soc. Exp. Biol. 32, 1537–1549. https://doi.org/10.1096/fj.201700740R